（ 弯曲菌药敏板（琼脂稀释法） 10T/盒 ）
1. 检验原理:
药敏培养板上包被不同浓度抗生素的 MH 琼脂( 5% 脱纤维羊血)，可检测目前临床及农业、养殖过程中抗弯曲菌感染的 7 类 11 种抗生素，每种抗生素的 MIC 范围：
| 所属种类 | 抗生素 | 简写 | MIC 范围 |
| 大环内酯类 | 红霉素 | ERY | （MIC: 0.5μg/ml～64μg/ml） |
| 大环内酯类 | 阿奇霉素 | AZI | （MIC: 0.5μg/ml～64μg/ml） |
| 喹诺酮及氟喹诺酮类 | 萘啶酸 | NAL | （MIC: 0.5μg/ml～64μg/ml） |
| 喹诺酮及氟喹诺酮类 | 环丙沙星 | CIP | （MIC: 0.5μg/ml～64μg/ml） |
| 氨基糖苷类 | 庆大霉素 | GEN | （MIC: 0.5μg/ml～64μg/ml） |
| 氨基糖苷类 | 链霉素 | STR | （MIC: 0.5μg/ml～64μg/ml） |
| 氯霉素类 | 氯霉素 | CHL | （MIC: 0.5μg/ml～64μg/ml） |
| 氯霉素类 | 氟苯尼考 | FLO | （MIC: 0.5μg/ml～64μg/ml） |
| 四环素类 | 四环素 | TET | （MIC: 0.5μg/ml～64μg/ml） |
| 酮内酯类 | 泰利霉素 | TEL | （MIC: 0.25μg/ml～32μg/ml） |
| 林可酰胺类 | 克林霉素 | CLI | （MIC: 0.25μg/ml～32μg/ml） |
注意：药敏板 1-11 列为检测列，第 12 列为对照列。对照列中 Q1 孔为培养板琼脂无菌质控， 加入无菌稀释液；Q2 孔为待测菌株生长质控，加入待检菌株；Q3-Q8 孔为弯曲菌药敏质控孔，加入弯曲菌药敏检测质控菌株 C.jejuni ATCC33560（同批药敏培养板质控菌株可只做一次）。
2. 操作方法:
①待检菌悬液制备：用无菌棉签或者取菌环挑取生长良好的待测弯曲菌菌落 3-4个，悬浮于 3ml 无菌稀释液中，充分混匀；
②质控菌株菌悬液制备：用无菌棉签或者取菌环挑取生长良好的质控菌株 C.jejuni ATCC33560 菌落 3-4 个，悬浮于 3ml 无菌稀释液中，充分混匀；
③稀释、调节菌液的浓度： 将待检菌悬液与质控菌悬液分别使用麦氏比浊仪测量菌液浓度达到 0.5 麦氏单位； 将 0.5 麦氏单位的菌悬液用无菌稀释液进行 10 倍稀释（取 100μl 的 0.5 麦氏单位的菌液加到 900μl 的生理盐水中，充分混匀），将制备好的菌液（约 2-3μl）接种于琼脂平板表面，每孔含菌量约为 104CFU；
④点样培养： 将稀释好的待检菌液倒入无菌加样槽，用八联排无菌加样器蘸取适量菌液点加到药敏培养板 检测列（ 1-11 列）每个孔以及质控孔 Q2 中的琼脂上； 用八联排无菌加样器蘸取适量同样稀释的弯曲菌质控菌株 ATCC33560 的稀释液加到药敏板的对照列（第 12 列）的 Q3-Q8 孔的培养基上； 取 2ul-3ul 的无菌稀释液加到对照列（第 12 列）的 Q1 孔中作为无菌培养基对照；盖上平板盖子，将药敏板放入微需氧环境中，42℃ 培养 24h 或者 37℃ 培养 48h ，取出药敏培养板，肉眼观察药敏板上每个培养孔中弯曲菌的生长结果。
注意：可使用加样器（推荐电动连续加样器）进行逐个孔加样，也可使用八道加样排枪加样， 每孔 2-3ul；为更容易判读，尽量将菌液加到孔中琼脂中央。
3. 结果判读:
①首先观察药敏板对照列：加无菌生理盐水的琼脂质控 Q1 孔上无任何细菌生长；待检菌株生长质控 Q2 孔上为菌苔生长；质控菌株 ATCC33560 在 Q3-Q8 孔中分别为：Q3，Q4，Q5 菌苔生长，Q6，Q7，Q8 无生长；
②如对照孔检测结果正确，开始判读检测孔，如不正确则检测孔结果无效；
检测孔结果判读：1-11 列检测孔，以列为单位，孔中培养基上完全没有细菌的生长则该孔中 抗生素的浓度判定为该药物的 MIC 值，如果有单一菌落或者因加样造成的薄雾状生长也判读为阴 性生长（无生长）；如果在最大浓度的琼脂孔中仍有细菌生长则判读为：MIC>64μg/ml 或者 MIC>32μg/ml（泰利霉素、克林霉素）；
在记录单上记录判读结果。
4.弯曲菌药敏板细菌生长情况样例：
